W naszym laboratorium zajmujemy się mechanizmami metabolizmu białek - utrzymania równowagi pomiędzy ich syntezą a degradacją. Badamy regulację translacji, układ ubikwityna-proteasom, sieć chaperonów oraz egzofery mięśniowe w proteostazie. Jednakże czasem intrygują nas tematy spoza tej listy. Wykorzystujemy techniki biochemiczne, mikroskopowe, genetyki molekularnej i bioinformatyczne do prowadzenia badań na komórkach ssaczych i nicieniu Caenorhabditis elegans.

Nasze badania

Adaptacja komórek do zimna

1

Aby przeciwdziałać zimnu, organizmy wykształciły różne rodzaje reakcji, od unikania zimna po adaptację. Tę ostatnią strategię stosują zwierzęta hibernujące, które w skrajnych przypadkach mogą przetrwać mroźne temperatury przez wiele dni. Skupiamy się na rozszyfrowaniu mechanizmów zmieniających ilość i rodzaje komórkowego RNA i białek, ponieważ tego typu cząsteczki są krytyczne dla decyzji "żyć albo umrzeć" komórki. Ponieważ w niektórych stanach chorobowych, takich jak udar mózgu, chłodzenie może ułatwić powrót pacjenta do zdrowia, zrozumienie, w jaki sposób komórki przystosowują się do zimna, może potencjalnie wpłynąć na leczenie chorób człowieka.

Mechanizmy egzoferezy mięśniowej

2

Odkryliśmy, że duże pęcherzyki pozakomórkowe, zwane egzoferami, które występują w neuronach i kardiomiocytach i przenoszą uszkodzone składniki subkomórkowe, są uwalniane przez mięśnie w celu wspierania wzrostu embrionalnego u Caenorhabditis elegans. Nasze wyniki pokazują, że tworzenie egzofer (egzofereza) stanowi transgeneracyjny system zarządzania metabolizmem/zasobami, który wspiera zarodki in utero. Obecnie badamy mechanizm powstawania egzofer i regulację egzoferezy na poziomie molekularnym. 

Mechanizmy składania miozyny wywołane stresem

3

Niewiele wiadomo na temat regulacji specyficznych dla mięśni programów odpowiedzi, które koordynują kontrolę jakości białek w warunkach stresu mechanicznego i w chorobach człowieka. Stworzyliśmy zestaw metod eksperymentalnych skoncentrowanych na Caenorhabditis elegans w celu dogłębnego zbadania mechanizmów indukcji stresu przez miozynę. Długoterminowym celem tego projektu jest zrozumienie, w jaki sposób sieci fałdowania i degradacji białek są skoordynowane z dynamiką składania miozyny, integralnością mięśni i ich naprawą w kontekście stresu mechanicznego. 

Kompleksy ligaz E3 w integracji proteostazy i starzenia się

4new

Los białek eukariotycznych od ich syntezy do zniszczenia nadzorowany jest przez system ubikwityna-proteasom (UPS). Współpraca ligaz E3, istotnych składników UPS rozpoznających uszkodzone lub źle sfałdowane białka, może prowadzić do tworzenia alternatywnych struktur ubikwitynacji, które pomagają w regulacji specyficzności substratów. Badamy, jak specyficzne pary ligaz E3 decydują o rekrutacji substratów i tworzeniu łańcuchów ubikwitynowych w celu koordynacji sieci proteolitycznych. Zrozumienie funkcji i identyfikacja sygnałów, które koordynują interakcje między ligazami E3, dostarczy informacji o tym, jak sieci proteolityczne są dostrojone do utrzymania proteostazy komórkowej w zdrowiu i chorobie.

 

Regulacja metabolizmu metioniny przez układ ubikwityna-proteasom

5new

Metylacja to modyfikacja, której ulegają różne cząsteczki komórkowe, od kwasów nukleinowych przez białka po lipidy. Ma ona kluczowe znaczenie dla regulacji wielu procesów biologicznych, w tym ekspresji genów, sygnalizacji, syntezy białek i metabolizmu lipidów. Długoterminowym celem tego projektu jest zrozumienie, jak system ubikwityna-proteasom moduluje potencjał metylacji komórek. Wrodzone zaburzenia metylacji są grupą rzadko opisywanych i prawdopodobnie w dużej mierze nierozpoznanych zaburzeń obejmujących procesy transmetylacji. Modelujemy te ludzkie choroby na Caenorhabditis elegans, aby zrozumieć podstawy molekularne zaangażowane w dysfunkcję enzymów szlaku metylacji i ich wpływ na fizjologię.

Wojciech Pokrzywa

Wojciech Pokrzywa, dr hab.

Adres do korespondencji:
Laboratorium Metabolizmu Białek
Międzynarodowy Instytut Biologii Molekularnej i Komórkowej w Warszawie
ul. Ks. Trojdena 4, 02-109 Warszawa, Polska
Email: Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript. |
www: pokrzywalab.com
tel: +48 (22) 597 0742; fax: +48 (22) 597 0715

 

STOPNIE NAUKOWE:

2020 - Habilitacja w dziedzinie Nauk Biologicznych, Instytut Biochemii i Biofizyki, Polska Akademia Nauk, Polska
2009 - Doktorat w Biological Engineering and Agronomic Sciences w Institute of Life Sciences, Molecular Physiology Group (FYMO), Catholic University of Louvain, Belgia.
2006 - Magister Advanced Science in Biological Engineering and Agronomic Sciences Katolicki Uniwersyt w Louvain, Belgia
2004 - Magister Mikrobiologii na Uniwesrsytecie Wrocławskim, Polska

DOŚWIADCZENIE ZAWODOWE

2017 - obecnie - Profesor, Kierownik Laboratorium Metabolizmu Białek, Międzynarodowy Instytut Biologii Molekularnej w Warszawie

2009 - 2017 - Staż podoktorski w Cologne Excellence Cluster on Cellular Stress Responses in Aging-Associated Diseases (CECAD), University of Cologne, Niemcy

2004 - 2008 - Studia doktoranckie w Institute of Life Sciences, Molecular Physiology Group (FYMO), Catholic University of Louvain, Belgia

WYRÓŻNIENIA, NAGRODY I ODZNACZENIA

2022 - SONATA BIS, Narodowe Centrum Nauki
2020 -
GRIEG, Narodowe Centrum Nauki
2018 - FIRST TEAM, Fundacja na rzecz Nauki Polskiej
2018 - EMBO Installation Grant
2017 - OPUS, Narodowe Centrum Nauki
2005 - Stypendium doktoranckie FNRS-Fund for Scientific Research, Belgium
2004 - Stypendium ERASMUS 

PokrzywaLab

Kierownik Laboratorium:

  • Wojciech Pokrzywa, PhD, DSc Habil

Starsi Badacze:

  • Małgorzata Piechota, PhD

Badacze Podoktorscy:

  • Abhishek Dubey, PhD

Technicy Badawczy:

  • Lilia Biriczova, M.Sc

  • Konrad Kowalski, M.Sc

Doktoranci:

  • Katarzyna Banasiak, M.Sc

  • Aniruddha Das, M.Sc

  • Pratik Kumar Mandal, M.Sc

  • Pankaj Thapa, M.Sc

  • Anwesha Sarkar, M.Sc

  • Natalia Szulc, M.Sc

Specjaliści ds. Wsparcia Laboratorium:

  • Anna Grabowska, PhD

  • Marta Niklewicz, M.Sc

2025

p70S6 kinase-dependent phosphorylation of the μ2 subunit of the AP2 adaptor complex is needed for clathrin-mediated endocytosis.

Tempes A, Brzozowska A, Węgierski T, Olek K, Jastrzębski K, Liszewska E, Misztal K, Machnicka K, Macias M, Szybińska A, Sitkiewicz E, Gozdz A, Wróbel AG, Miaczynska M, Pokrzywa W, Jaworski J, Malik AR.

bioRxiv. 2025

A novel MAPK1 variant in a family with complex psychiatric and neurodegenerative clinical phenotype.

Dubey AA, Rydzanicz M, Barczak A, Szulc NA, Surpeta B, Kuzniewska B, Gaweda-Walerych K, Wężyk M, Berdyński M, Fichna JP, Kostrzewa G, Gasperowicz P, Stępniak I, Szymańska K, Szczałuba K, Brezovsky J, Dziembowska M, Pokrzywa W, Ploski R.

Research Square. 2025

DEGRADATOR: A Gaming Expedition Into Targeted Protein Degradation Therapies.

Szulc NA, Olchowik A, Jaszczak P, Janiak B, Cup M, Tomaszewski J, Pokrzywa W.

J Chem Educ. 2025

2024

HSP70 inhibits CHIP E3 ligase activity to maintain germline function in Caenorhabditis elegans.

Thapa P, Chikale RV, Szulc NA, Pandrea MT, Sztyler A, Jaggi K, Niklewicz M, Serwa RA, Hoppe T, Pokrzywa W.

J Biol Chem. 2024

Optogenetic induction of mechanical muscle stress identifies myosin regulatory ubiquitin ligase NHL-1 in C. elegans.

Kutzner CE, Bauer KC, Lackmann JW, Acton RJ, Sarkar A, Pokrzywa W, Hoppe T.

Nat Commun. 2024

Floxuridine supports UPS independent of germline signaling and proteostasis regulators via involvement of detoxification in C. elegans.

Dubey AA, Sarkar A, Milcz K, Szulc NA, Thapa P, Piechota M, Serwa RA, Pokrzywa W.

PLoS Genet. 2024

SARS-CoV-2 inhibitory potential of fish oil-derived 2-pyrone compounds by acquiring linoleic acid binding site on the spike protein.

Duragkar N, Chikhale R, Piechota M, Danta CC, Gandhale P, Itankar P, Chikhale S, Gurav N, Khan MS, Pokrzywa W, Thapa P, Bryce R, Gurav S.

Int J Biol Macromol. 2024

Pheromone-based communication influences the production of somatic extracellular vesicles in C. elegans

Szczepańska A, Olek K, Kołodziejska K, Yu J, Ibrahim AT, Adamkiewicz L, Schroeder FC, Pokrzywa W, Turek M.

Nat Commun. 2024

DEGRONOPEDIA: a web server for proteome-wide inspection of degrons.

Szulc NA, Stefaniak F, Piechota M, Soszyńska A, Piórkowska G, Cappannini A, Bujnicki JM, Maniaci C, Pokrzywa W.

Nucleic Acids Res. 2024

2023

A novel de novo FEM1C variant is linked to neurodevelopmental disorder with absent speech, pyramidal signs, and limb ataxia.

Dubey AA, Krygier M, Szulc NA, Rutkowska K, Kosińska J, Pollak A, Rydzanicz M, Kmieć T, Mazurkiewicz-Bełdzińska M, Pokrzywa W, Płoski R.

Hum Mol Genet.. 2023

Preparation of Caenorhabditis elegans for Scoring of Muscle-derived Exophers.

Banasiak K, Turek M, Pokrzywa W.

bio-protocol Journal. 2023

Lysine-deficient proteome can be regulated through non-canonical ubiquitination and ubiquitin-independent proteasomal degradation.

Szulc NPiechota M, Thapa P, Pokrzywa W.

bioRxiv. 2023

Impaired iron recycling from erythrocytes is an early hallmark of aging.

Slusarczyk P, Mandal PK, Zurawska G, Niklewicz M, Chouhan K, Mahadeva R, Jończy A, Macias M, Szybinska A, Cybulska-Lubak M, Krawczyk O, Herman S, Mikula M, Serwa R, Lenartowicz M, Pokrzywa W, Mleczko-Sanecka K.

eLife. 2023

In silico analysis of the profilaggrin sequence indicates alterations in the stability, degradation route, and intracellular protein fate in filaggrin null mutation carriers.

Paul AA, Szulc NA, Kobiela A, Brown SJ, Pokrzywa W, Gutowska-Owsiak D.

Front. Mol. Biosci.. 2023

Lysine deserts and cullin-RING ligase receptors: Navigating untrodden paths in proteostasis.

Szulc NA, Piechota M, Biriczova L, Thapa P, Pokrzywa W.

iScience. 2023

Sterility-Independent Enhancement of Proteasome Function via Floxuridine-Triggered Detoxification in C. elegans.

Dubey AA, Szulc NA, Piechota M, Serwa RA, Pokrzywa W.

bioRxiv. 2023

SAM, SAH and C. elegans longevity: insights from a partial AHCY deficiency model.

Thapa P, Olek K, Kowalska A, Serwa RA, Pokrzywa W.

NPJ Aging. 2023

2022

Pheromone-dependent olfaction bidirectionally regulates muscle extracellular vesicles formation.

Banasiak K, Szczepańska A, Kołodziejska K, Ibrahim AT, Pokrzywa W, Turek M.

bioRxiv. 2022

A Dimer-Monomer Switch Controls CHIP-Dependent Substrate Ubiquitylation and Processing.

Balaji V, Müller L, Lorenz R, Kevei É, Zhang WH, Santiago U, Gebauer J, Llamas E, Vilchez D, Camacho CJ, Pokrzywa W, Hoppe T.

Mol Cell. 2022

Ferritin-mediated iron detoxification promotes hypothermia survival in Caenorhabditis elegans and murine neurons.

Pekec T, Lewandowski J, Komur AA, Sobańska D, Guo Y, Świtońska-Kurkowska K, Małecki JM, Dubey AA, Pokrzywa W, Frankowski M, Figiel M, Ciosk R.

Nat Commun. 2022

CHIP ubiquitin ligase is involved in the nucleolar stress management.

Piechota M, Biriczova L, Kowalski K, Szulc NA, Pokrzywa W.

bioRxiv preprint. 2022

A heterotypic assembly mechanism regulates CHIP E3 ligase activity.

Das A, Thapa P, Santiago U, Shanmugam N, Banasiak K, Dabrowska K, Nolte H, Szulc NA, Gathungu RM, Cysewski D, Krüger M, Dadlez M, Nowotny M, Camacho CJ, Hoppe T, Pokrzywa W.

EMBO J. . 2022

2021

Maintaining proteostasis under mechanical stress.

Höhfeld J, Benzing T, Bloch W, Fürst DO, Gehlert S, Hesse M, Hoffmann B, Hoppe T, Huesgen PF, Köhn M, Kolanus W, Merkel R, Niessen CM, Pokrzywa W, Rinschen MM, Wachten D, Warscheid B.

EMBO Rep.. 2021

Muscle-derived exophers promote reproductive fitness.

Turek M, Banasiak K, Piechota M, Shanmugam N, Macias M, Śliwińska MA, Niklewicz M, Kowalski K, Nowak N, Chacinska A, Pokrzywa W.

EMBO Rep.. 2021

The Dose-Dependent Pleiotropic Effects of the UBB+1 Ubiquitin Mutant.

Banasiak K, Szulc NA, Pokrzywa W.

Front. Mol. Biosci. . 2021

2020

CHIP ubiquitylates NOXA and induces its lysosomal degradation in response to DNA damage.

Albert M-C, Brinkmann K, Pokrzywa W, Günther SD, Krönke M, Hoppe T, Kashkar H.

Cell Death & Disease. 2020

Ubiquitin Signaling Regulates RNA Biogenesis, Processing, and Metabolism.

Thapa P, Shanmugam N, Pokrzywa W.

BioEssays. 2020

Article BioShell 3.0: Library for Processing Structural Biology Data.

Macnar JM, Szulc N, Kryś JD, Badaczewska-Dawid AE, Gront D.

Biomolecules. 2020

The ubiquitin-conjugating enzyme UBE2K determines neurogenic potential through histone H3 in human embryonic stem cells.

Fatima A, Irmak D, Noormohammadi A, Rinschen MM, Das A, Leidecker O, Schindler C, Sánchez-Gaya V, Wagle P, Pokrzywa W, Hoppe T, Rada-Iglesias A, Vilchez D.

Commun Biol.. 2020

Nutritional status and fecundity are synchronised by muscular exopheresis.

Turek M, Piechota M, Shanmugam N, Niklewicz M, Kowalski K, Chacińska A, Pokrzywa W.

bioRxiv. 2020

2018

The ubiquitin ligase UBR5 suppresses proteostasis collapse in pluripotent stem cells from Huntington's disease patients.

Koyuncu S, Saez I, Lee HJ, Gutierrez-Garcia R, Pokrzywa W, Fatima A, Hoppe T, Vilchez D.

Nat Commun.. 2018

Ubiquitylation Pathways In Insulin Signaling and Organismal Homeostasis.

Balaji V, Pokrzywa W, Hoppe T.

Bioessays. 2018

2017

Repair or Destruction: An Intimate Liaison Between Ubiquitin Ligases and Molecular Chaperones in Proteostasis

Kevei É, Pokrzywa W, Hoppe T

FEBS Lett. doi:10.1002/1873-3468.12750.. 2017

CHIPped balance of proteostasis and longevity.

Pokrzywa W, Hoppe T.

Oncotarget. 2017

Chaperone-directed ubiquitylation maintains proteostasis at the expense of longevity.

Pokrzywa W, Lorenz R, Hoppe T

Worm. 2017